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交聯葡聚糖凝膠

鎖定
SephadexG交聯葡聚糖的商品名為Sephadex,不同規格型號的葡聚糖用英文字母G表示,G後面的阿拉伯數為凝膠得水值的10倍。例如,G-25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克,同樣G-200為每克幹膠吸水20克。交聯葡聚糖凝膠的種類有G-10、G-15、G-25、G-50、G-75、G-100、G-150、和G-200。因此,“G”反映,凝膠的交聯程度,膨脹程度及分佈範圍。
中文名
交聯葡聚糖凝膠
外文名
Sephadex
適用於
脱鹽、肽與其它小分子的分離
溶    於
水及親脂溶劑
使用方法
乙醇浸泡

交聯葡聚糖凝膠簡介

交聯葡聚糖凝膠商品屬性

Sephadex LH-20,是─Sephadex G-25的羧丙基衍生物, 能溶於水及親脂溶劑,用於分離不溶於水的物質。
交聯葡聚糖凝膠是 將純化後的線性葡聚糖(a-1,b-吡喃型葡聚糖)與環氧氯丙烷反應,再導入丙三醇側鏈而在葡聚糖鏈間形成交聯鏈,再將所得的凝膠製成直徑不同的球形即可。所得三維實體在水中能溶脹而不能溶解。交聯度越高,凝膠孔徑越小。

交聯葡聚糖凝膠用途

Sephadex G-10葡聚糖凝膠 G-10 分離範圍<700 適用於脱鹽、肽與其它小分子的分離;
Sephadex G-15葡聚糖凝膠 G-15 分離範圍<1500 適用於脱鹽、肽與其它小分子的分離;
Sephadex G-25葡聚糖凝膠 G-25 分離範圍 1000-5000 適用於脱鹽、肽與其它小分子的分離;
SephadexG-50葡聚糖凝膠 G-50 分離範圍 1500-30000 適用於多肽分離、脱鹽、清洗生物提取液、分子量測定;
Sephadex G-75葡聚糖凝膠 G-75 分離範圍 3000-80000 適用於蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數測定;
Sephadex G-100葡聚糖凝膠 G-100 分離範圍 4000-150000 適用於蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數測定;
Sephadex G-150葡聚糖凝膠 G-150 分離範圍 5000-300000 適用於蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數測定;
Sephadex G-200葡聚糖凝膠 G-200 分離範圍 5000-600000 適用於蛋白分離純化、分子量測定、平衡常數測定。

交聯葡聚糖凝膠製備過程

葡聚糖凝膠微珠表面形態存在粒子凝集和表面粗糙兩種不良情況。粒子凝集的原因是分散劑聚醋酸乙烯酯(PVAc)在鹼性條件下水解導致親水性增強,以及交聯反應的中間產物具有絮凝作用。另外,交聯後粒子粘度增大也可導致凝集。葡聚糖微珠表面粗糙是由於後處理時PVAc的微小附着物沒有從微珠表面完全除去而造成的。作者採取低温分散、交聯,分步加入交聯劑和調節攪拌速度等控制手段,有效地解決了上述問題。

交聯葡聚糖凝膠使用方法

1. 乙醇浸泡:
在室温下,將乾粉浸泡於50-60%乙醇中至少24小時,並不斷攪拌以保證凝膠溶脹,用無鹽水洗去殘存的乙醇濾幹;
2.無鹽水浸泡:
室温下,在無鹽水中充分溶脹24小時,間隙攪拌,以保證凝膠的完全溶脹,然後;
3. 鹽酸浸泡:
常温下再用0.2N HCl浸泡12小時,間隙攪拌,濾幹,水洗至中性;
4. 將溶脹好的凝膠脱氣後(真空抽濾或超聲波)根據裝柱要求一次性置入柱內,注意保持濕態裝柱,並避免柱內產生氣泡或斷層;
5. 上樣前平衡層析柱至少3-5 個柱體積直到記錄儀基線變得平穩為止(流出液的PH值等於上柱的Buffer 的PH值);
6. 凝膠過濾的上樣量一般為5%的柱牀體積,我們建議初次上樣控制在1-2%的牀體積,視分離情況可以調整;脱鹽時上樣量可以達到20% 的柱牀體積,柱高的選擇也與分離要求相關,柱高控制在40-50cm 以下,過高的凝膠層會引起較大的反壓,應當儘可能避免。難分離物質要有一定柱高和流速控制,脱鹽時高徑比為5:1 即可;
7. 洗脱方法:
可以用無鹽水,也可以採用上柱時的緩衝液洗脱;在上柱Buffer 中加入NaCl等梯度洗脱或鹽梯度洗脱也可以完全分離純化
8. 在位清洗(CIP)
凝膠使用十次後作一次CIP,目的是去除柱牀內沉澱的及頑固殘留的蛋白。方法是以40cm/h 用1M 氫氧化鈉反向洗四個柱體積,再以至少三個柱體積平衡緩衝液再生。
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